به نام خدامعرفی شرکت نانو سبزآوران طوبیشرکت نانو سبزآوران طوبی با استفاده از اساتید نخبه موسسه تحقیق... نمایش بیشتربه نام خدامعرفی شرکت نانو سبزآوران طوبیشرکت نانو سبزآوران طوبی با استفاده از اساتید نخبه موسسه تحقیقات گیاهپزشکی و کارشناسان پژوهشی متخصص و با تجربه در جهت رفع نيازهاي راهبردي کشور آغاز به کار نموده است. رسالت اصلی شرکت طوبی حفظ سلامت انسان، دام و محیط زیست از طریق تولید آفتکش های گیاهی سازگار با محیط زیست برای کنترل آفات کشاورزی و دامی می باشد. به عبارت دیگر کنترل آفات توسط ترکیبات عاری ازسموم شیمیایی در سرلوحه برنامه های این شرکت قرار دارد.این شرکت با استفاده از فناوری های نو در عرصه کنترل آفات با قابلیت تلفیق با کنترل بیولوژیک موفق به عرضه محصولات جدیدی شده است. استفاده از آفتکش های بیولوژیک و گیاهی به همراه سایر روش های کنترل بيولوژيک گامي بزرگ در توليد محصولات کشاورزي سالم به شمار می رود. حشره کش هاي گياهي تهیه شده از انواع مواد موثره گیاهی مي باشند که با فرمولاسيون نوین مي تواند ضمن حفظ خاصيت مواد موثره خود در محيط؛، کارايي بالا يي در کنترل و مديريت آفات کشاورزي داشته باشد. از محصولات تجاری این شرکت تحت عنوان آفتکش گیاهی لیکو پست و فیتوتوکس معرفی شده اند. این ترکیبات به دليل اثرات حشره کشي روي آفات مختلف و خطرات کم آن براي انسان و پستانداران جايگزين مناسبي برای سموم شيميايي در کنترل آفات محسوب می شوند.تولید فرمولاسیون انواع آفت کش های گیاهی به شکل نانو و میکروکپسولتولید انواع آفت کش های سالم و عاری از سم شیمیایی برای تولید محصولات کشاورزی سالمتولید فرمولاسیون آفت کش های پلیمری نانوکپسوله برای آفات بهداشتیتولید پودر و قرص های تدخینی برای محصولات انباری جایگزین متیل بروماید و فسفینکپسوله کردن قارچ های بیمارگر حشرات ( بیو آفتکش ها)کپسوله کردن انواع باکتری هاتولید داروی گیاهی کنترل کنه واروآ انگل زنبور عسلتولید داروهای ضدعفونی کننده انگل های خارجی دام، طیور و پرندگانhttp://nstooba.comIntroduction of Nano Green TOOBANano Green Tooba Company has started using elite professors of the Iranian Research Institute of Plant Protection and experienced experts to meet the strategic needs of the country. Tooba’s main mission is to protect human, animal and environmental health through the production of eco-friendly pesticides to control agricultural and livestock pests. In other words, control of pests by combining nontoxic and herbal nano radicals is at the top of the company’s plans. The company has succeeded in introducing new products through the use of new pest control technologies combined with biological control. The use of biological and plant pesticides along with other biological control methods is a major step in the production of healthy and organic agricultural products. Plant insecticides are prepared from various plant-based substances with the new formulation while preserving their active agents in the environment, can maintain a high level of control and management of agricultural pests. Due to the effects of insecticides on different pests and their low risk for humans and mammals, these compounds are the appropriate alternative to chemical pesticides in pest control.Tooba is the name of an evergreen tree in heaven belong to Zahra, daughter of Mohammad prophet. All the love and kindness in the world comes from this tree. never dies…never dries
درباره من
به نام خدامعرفی شرکت نانو سبزآوران طوبیشرکت نانو سبزآوران طوبی با استفاده از اساتید نخبه موسسه تحقیق... نمایش بیشتر
تائیدیه
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
171 Research Article Insecticidal efficacy of nanoemulsion containing Mentha longifolia essential oil against Ephestia kuehniella (Lepidoptera: Pyralidae) Mojdeh Louni1 , Jahanshir Shakarami1* and Maryam Negahban2 1. Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, Lorestan University, Khorramabad, Iran. 2. Iranian Research Institute of plant protection, Tehran, Iran. Abstract: In recent years, different formulations such as nanoemulsions have been widely used for the target delivery, and enhanced biological functions of pesticides combinations. In this study, contact toxicity of Mentha longifolia L. essential oil compared with its nanoemulsion on Ephestia kuehniella Zeller has been investigated. The experiments were conducted and executed at 27 ± 1 °C, and 75 ± 5% relative humidity under dark conditions. Chemical composition of this plant extract was also studied. The main constituents were pulegone (28.84%), 1,8-cineol (19.6%), p-menthan-3-one-cis (8.2%), β-pinene (6.46%) and p-menthan-3-one-trans (5.86%). Results indicated that the mortality rate of 5 th instar larva of E. kuehniella increased with rising concentrations (10000- 40000ppm) for oil and (8000-20000 ppm) for nanoemulsion, respectively. The essential oil LC50 was 21352ppm, while this value for nanoemulsion was 14068ppm. According to the results, nanoemulsion was more effective than essential oil. M. longifolia oil had lower durability and the 50% persistent time (PT50) was 2.39 day compared to the nanoemulsion (PT50 = 17.13 day) in the highest concentration of essential oil. The nanoparticle size was 14-36 nanometers (nm) when the transmission electron microscope (TEM) was applied. The surface morphology of nanoemulsion was also studied by TEM. The average size of the particles was estimated 234nm by using laser light scattering apparatus. The overall results of this study show that by using nanoemulsion formulation, the effect of essential oil contact toxicity and its durability increases. Hence, the nanoemulsion slow-release formulation may represent a new category of biopesticides and this should be considered in the integrated pest management program. Keywords: Contact toxicity, Ephestia kuehniella, Essential oil, Mentha longifolia, Nanoemulsion Introduction12 The main quantitative and qualitative losses of stored products can be related to storage pests (Rumbos et al., 2016). One of the major pests in industrial flour mills in temperate climates is Handling Editor: Saeid Moharramipour ________________________________ * Corresponding author, e-mail: shakarami.j@lu.ac.ir Received: 20 January 2018, Accepted: 30 April 2018 Published online: 12 May 2018 the Mediterranean flour moth, Ephestia khehniella Zeller (Lepidoptera: Pyralidae) (Jemaa et al., 2013). Moth larva can decrease the quality of stored products by feeding, webbing and fecal material (Hansen and Jensen, 2002). The excessive usage of fumigant chemical pesticides (e.g. phosphine and methyl bromide) in order to control stored product pests can raise emergence of resistant insects, residues in agriculture products and in the environment (Dent, 2000; Fields and White, Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 172 2002). Methyl bromide has also been phased out in 2005 as an ozone depleter (Rajendran and Sriranjini, 2008). Therefore, it is necessary to develop safe alternatives that are inexpensive, environmentally friendly, and convenient for usage. Various aromatic plant preparations like powders (Tesfu and Emana 2013), solvent extracts (Moharramipour and Nazemi Rafih, 2008), and essential oils (Ziaee et al., 2014a) have been investigated for their insecticidal activity. These compounds can be used as fumigants and contact biopesticides for control of stored foodstuff pests (Gusmao et al., 2013). The mints, Mentha longifolia L. species is from the family of Labiatae (Lamiaceae), which are widely grown in Eurasia, Australia, and South and North Africa (Sharapov, 2012). This species also is one of the most common aromatic plants in Iran that has considerable toxicant effects on various storage pests (Shahmirzaei et al., 2016). Nowadays, there is a considerable interest towards the biological properties of essential oils (EOs). Different methods and procedures have been developed to conserve EOs, because they are unstable and susceptible to degradation when exposed to environmental stresses such as light, oxygen and temperature. One of the best techniques is encapsulation in different colloidal systems including nanoemulsions. Encapsulation is an efficient approach to improve the physical stability of EO, protect it from evaporation, and enhance EO bioactivity, because of controlled release of oil as the active ingredient (Majeed et al., 2015; Moharramipour and Negahban, 2014). Nanocarrier systems are classified in two categories: polymer-based nanoparticles and lipid-based nanoparticles (Anandharamakrishnan, 2014). Monoglycerides are esters of fatty acids and glycerol. Thanks to their emulsifying property, monoglycerides have diverse applications as components of nano and liposomal formulations in drug delivery systems. One of the common industrial monoacylglycerols is Glyceryl monostearate (GMS). GMS is used as a preservative agent, emulsifying agent for oils, waxes and solvent, and also solidifier and controlled release factor in formulations. The mentioned compound is used to produce various lipid-based nanoparticle delivery systems such as nanoemulsion (Kavadia et al., 2017). Some studies have been conducted on different oil formulations. For instance, Moretti et al. (2002) stated that microcapsolation is a suitable technique for conservation and controlled release of Rosmarinus officinalis L. oil. Then, Lai et al. (2006) conducted a research about the effect of solid lipid oil of Artemisia arborescens L. on Bemesia tabaci (Gennadius). They concluded that this constitute has a high physical stability in various temperatures (4-40 C) in 60 days. In other study, the high ability of Artemisia sieberi Besser nanocapsulated essential oil on repellent and nutrition properties of Plutella xylostella (Lep. Plutellidae) was confirmed (Negahban et al., 2013 a & b). Various researchers used high energy emulsification approach for the generation of EO loaded nanoemulsion. For example, Laing et al. (2012) encapsulated peppermint oil in starch based nanoemulsions to increase its stability and bioavailability. The strong influence of nanogel from Carum copitum L. was also reported against Sitophilus granarius L. and Tribolium confusum (Herbst) (Ziaee et al., 2014b). However, there is no study about nanoemulsion properties from M. longifolia oil until now. The structure of nanoemulsion includes a lipid phase dispersed in an aqueous continuous phase, where each oil droplet is surrounded by a thin interfacial layer consisting of emulsifier molecules (Ranjan et al., 2016). The mentioned compounds (due to their very small size) provide an appropriate method to enhance the physical stability of the encapsulated active ingredients and raise the distribution of insecticidal agents in the target products (Topuz et al., 2016). The objectives of this study are: a) evaluating major chemical composition (GCMS) of M. longifolia oil, b) investigating about surface morphology (TEM) and particle size distribution of prepared nanoemulsion from the Louni et al. _______________________________________________________ J. Crop Prot. (2018) Vol. 7 (2) 173 mentioned oil, c) comparing the contact activities of M. longifolia essential oil before and after nano-formulation on the mortality of E. kuehniella, and d) studying about the effect of nanoencapsulation on the durability of the oil on E. kuehniella larva. Materials and Methods Experiments were carried out in the laboratory of Toxicology at Lorestan University, Khorramabad, Iran. All experiments were conducted in an incubator at 27 ± 1 °C and 75 ± 5% relative humidity in continuous darkness. Plant material In July 2016, aerial parts (Leaves, flowers and stems) of M. longifolia were collected at full flowering stage from Khorramabad (47°41'E32°56'N), Iran. The plant material was air-dried at room temperature (20-25 °C) with suitable ventilation, for seven days until crisp. The dried samples were maintained at -24 °C and then applied to extract its essential oil. Isolation and analysis of essential oil The air-dried samples were exposed to hydrodistillation (100g of each sample in 1200 ml of distilled water) using a Clevenger type apparatus for 4 hours. The oils were dried over anhydrous sodium sulphate and stored in a refrigerator at 4 °C. The chemical composition of the essential oil was determined with the help of GC-MS technique, and by using a Shimadzu GC-9A with helium (a carrier gas) at a linear velocity of 0.3m/s on a DB-5 column (30m 0.25mm i.d, film thickness: 0.25µm). The oven w programmed to increase the temperature of 60 °C (3 min) isotherm to 210 °C at a rate of 3 °C/min. Temperatures of injector and detector were, respectively, 300 and 270 °C. The Gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) analysis was performed on a Varian 3400 equipped with a DB-5 column with the similar characteristics as the one used in GC. Here, the transfer line temperature and the ionization energy were, respectively, 260 °C and 70 eV. By comparing the essential oil components GC retention times and their mass spectra with known combinations, the unknown essential oil components were clarified. Insect cultures The Mediterranean flour moth, E. kuehniella, was reared on artificial diets consisting of 65% wheat flour, 25% wheat bran and 10% baker’s yeast in plastic dishes with 33 cm diameter and 13cm height. The thin fabrics were employed as dishes lid. The cultures were kept in a rearing room at 27 ± 1 °C and 75 ± 5% relative humidity under dark condition. Preparing of nanoemulsion For preparation of the aqueous phase, 90ml of purified water and 3g of tween 80 (Tween®80, Ph Eur, JP, NF, 1130g/mol, Merck, GER) were mixed by using mechanical mixer (HeiTORQUE, Heidolph, Germany) in a 300-ml beaker at 5-10 °C. The rotating speed was 500- 1000rpm that was regulated manually (about 50rpm per 3 minutes). Glyceryl monostearate (GMS) (2g) (99%, 358.56g/mol, Merck, GER) were heated at 80 °C by using magnetic stirrer (RH basic 2, IKA, GER) at rotating speed of 200 to 1000rpm (50rpm per second). After being melted, 2g of tween 80 was added. Then, temperature was decreased (1 °C in each 15 second) until reaching to 20 °C. In the next stage, 5g of pure essential oil of M. longifolia were mixed with GMS and tween 80 drop by drop under agitation to form the nanoemulsion oil phase. Then this compound was added to the aqueous phase drop by drop and mixed by using homogenizer apparatus (T 18 basic ULTRA-TURRAX package, IKA, GER) with rotating speed of 10000 to 20000rpm for 30 minutes (15 minute at10000 rpm and 15 minute at 20000rpm) until the reaction was ended. Survey of nanoemulsion surface morphology and nanoparticle size The transmission electron microscope (TEM) (Zeiss-EM10C-100KV, GER) was used for observation the surface and morphology of nanoemulsion. Particle size distribution of Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 174 nanoemulsion was estimated by dynamic light scattering (DLS) (Nano ZS, Malvern, UK) apparatus. Contact toxicity To evaluate the contact toxicity of M. longifolia essential oil and its nanoemulsion on E. kuhniella 5thinstar larva, the method of spraying on surface of insect body and dishes was selected (Morishita, 2001). Preliminary tests were scheduled to select the proper concentration ranges of M. longifolia oil and its nanoemulsion. Oil was diluted in 10% ethanol whereas water was used assolvent for nanoemulsion. Oil was used at concentrations of 10000, 14125.3, 19952.6, 28183.8 and 40000ppm, and nanoemulsion at concentrations of 8000, 10000, 12589.2, 15848.9 and 20000ppm. Ten 5 thinstar larva of E. kuhniella were placed at the bottom of each petri dish (9 cm) with a perforated lid, covered with thin fabric to allow gas exchange. One ml each of the estimated concentrations from oil and nanoemulsion was diffused on each petri dish. In order to uniformly spray the larvae in petri dishes, the potter tower apparatus (Potter tower, Burcard, UK) was used. Pressure of the device at spraying time was adjusted to 8 bars. Experiments were done in 5 replications for each concentration. After 24 hours from the experiment assembly, mortality percentage was evaluated. Ethanol 10% was used for essential oil control group. There were two control groups for nanoemulsion (water and nanoemulsion without essential oil). Durability of contact toxicity The experiments were performed at 40000ppm (lethal concentration for 80% mortality) of M. longifolia oil, as achieved from contact toxicity bioassay. The used concentration was left for one day in glass vials exposed to air. Ten E. kuhniella 5 th instar larva were placed at the bottom of each petri dish, 9cm diameter. Then, predetermined concentration of each treatment was sprayed by potter tower apparatus on larva body and dishes. The spraying rate was 1ml for every replication. After 24 hours, the number of dead larva was counted and the mortality percentage was calculated. Counting were made at intervals of 2 days until no mortality was observed. It is noteworthy that there is 2 days off among experiments. Experiments were repeated 5 times at estimated concentration of each combination. After spraying, the petri dishes were closed by thin fabrics. Data analysis By using Abbott’s (1925) formula the mortality data was corrected to control mortality rate. The analysis of variance (ANOVA) was used for each experiment. Probit analysis (Finney, 1971) was also employed to estimate 50% lethal concentration (LC50) and 50% persistent time (PT50) values by SAS 9.4 (SAS Institute, 1996). The Tukey’s multiple range test was applied at the value of P = 0.05 to clarify differences among multiple means using SAS 9.4 (SAS Institute, 1996). Results Chemical composition of Mentha longifolia essential oil GC-MS analysis of M. longifolia oil is reported in Table 1. Major components were pulegone (28.84%), 1, 8-cineol (19.6%), p-menthan-3- one-cis (8.2%), β-pinene (6.46%) and pmenthan-3-one-trans (5.86%). Nanoemulsion surface morphology and particle size distribution TEM images (as can be seen from Fig. 1) show nucleus and wall structure of nanoemulsion. Nanoparticle sizes by using TEM were around 14-36nm. The mean size of particles, according to Fig. 2, was estimated about 234nm using laser light scattering apparatus (Fig. 2). Louni et al. _______________________________________________________ J. Crop Prot. (2018) Vol. 7 (2) 175 Table 1 Chemical composition of the essential oil from Mentha longifolia. Compounds RT Content (%) α-phellhandrene 5.21 0.2 α-pinene 5.3 3.3 Camphene 5.6 0.97 β-pinene 6.08 6.46 β-myrcene 6.34 1.47 α-terpinene 6.76 1.02 Limonene 6.92 1.92 1,8-cineol 7.18 19.6 δ-terpinene 7.4 1.87 Terpinolene 7.86 0.59 Cis-β-terpineol 8.32 1.51 Octyl-acetate 8.72 0.12 Linalool 8.8 0.09 Sabinenehydrate 8.93 0.17 Trans-β-terpineol 9.15 0.24 α-campholene aldehyde 9.29 0.1 Menthofuran 9.39 0.17 p-menthan-3-one-cis 9.69 8.2 Menthone 9.75 0.95 p-menthan-3-one-trans 9.9 5.86 α-Terpineol 10.03 0.6 Borneol 10.09 1.43 Cis-iso-pulegone 10.16 1.08 β-Fenchol 10.3 3.79 2-isopropyl-2,5-dimethyl-cyclohexanone 10.83 2.75 Pulegone 11.09 28.84 Caryophylene 12.71 0.79 Piperitenone 12.88 1.65 Spathulenol 15.36 0.58 α-Caryophylene epoxide 15.43 3.37 β-Caryophylene epoxide 15.73 0.32 RT: retention time. Figure 1 A, B: Transmission microscope images of nanoemulsion core structure from Mentha longifolia oil. Contact toxicity The contact toxicity of M. longifolia oil and its nanoemulsion was tested on 5th instar larva of E. kuehniella. The results showed that in both treatments (for oil: F = 36.16; df = 5, 20; p > 0.0001, and for nanoemulsion: F = 43.92; df = 4, 20; p > 0.0001) with rising concentration mortality was increased. As seen in Fig. 3, used concentrations in nanoemulsion (8000- 20000ppm) were less than essential oil doses (10000-40000ppm). The highest and the lowest mortality were 88% (40000ppm) and 12.20% (10000ppm) in the oil treatment, respectively. (A) (B) Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 176 Figure 2 Size distribution of nanoemulsion from Mentha longifolia oil. The highest concentration (20000ppm) of the nanoemulsion cuased 79.5% mortality of E. kuehniella larva. At the lowest dose (8000ppm), mortality reached 20%. The mortality percentage of nanoemulsion control groups (water and nanoemulsion without oil) was the same. At 21352ppm, M. longifolia oil caused 50% mortality with a 24 hours exposure, while nanoemulsion LC50 was 14068ppm at the same time (Table 2). The relative median potency parameter (RMP) showed that there is a significant difference between LC50 values of nanoemulsion and essential oil (Table 3). These observations demonstrated that nanoemulsion in lower concentrations compared with M. longifolia oil has a considerably greater effect on the control of E. kuehniella larvae. Durability of contact toxicity According to Fig. 4, the results showed that nanoemulsion has longer durability compared to essential oil on E. kuehniella larva. Durability of nanoemulsion lasted for 33 days. In the first five days, its effect on mortality was 100%, and then it showed a reduced trend until day 33 when mortality rate was zero. On the other hand, the EO had lower durability as its effect on larva mortality was 84% on the first day. This value reached to zero by the 7th day. PT50 for nanoemulsion and EO were 2.39 and 17.13 days, respectively (Table 4). The results showed that nano-formulation causes slowrelease of EO and raises its period of durability on E. kuehniella larva. Essential oil 0 20 40 60 80 100 0 10000 20000 30000 40000 50000 Concentration (ppm) Mortality (%) EO Control a b c d e 0 20 40 60 80 100 0 10000 20000 30000 Mortality (%) Concentration (ppm) Nanoemulsion NEO control (water) NEO without oil a b bc d c Figure 3 Mortality Percentage of Ephestia kuehniella larva exposed to different concentrations of Mentha longifolia oil and its nanoemulsion. EO) Essential oil, NEO) Nanoemulsion The mortality percentage of nanoemulsion control groups was the same. Louni et al. _______________________________________________________ J. Crop Prot. (2018) Vol. 7 (2) 177 Table 2 LC50 values of Mentha longifolia oil and its nanoemulsion against Ephestia Kuhniella. 95% confidence limits (ppm) Compound n Chi-square Intercept df slope ± SE P-value LC50 (ppm) Lower Upper Essential oil 250 0.92 -16.2 ± 2.14 3 3.75 ± 0.49 0.82 21352 19010 24011 Nanoemulsion 250 1.31 -18.2 ± 3.02 3 4.38 ± 0.73 0.72 14068 12739 15719 Table 3 Comparison of estimated LC50 of Mentha longifolia oil and its nanoemulsion on Ephestia kuehniella larvae. LC50 (ppm) (EO) LC50 (ppm) nanoemulsion RMP1 95% confidence limits 21352 11128 1.55 1.26-2.03 RMP = Relative Median Potency. Table 4 PT50 values of Mentha longifolia oil and its nanoemulsion against Ephestia Kuhniella at 40000ppm. Compounds PT50 (day) Chi-square Intercept df Slope ± SE P-value 95% confidence limits (day) Lower Upper Essential oil 2.39 0.04 1.07 ± 0.21 1 -2.83 ± 0.43 0.83 1.94 2.91 Nanoemulsion 17.13 1.09 5.49 ± 0.59 7 -4.45 ± 0.48 0.99 16.06 18.33 0 20 40 60 80 100 0 10 20 30 40 Mortality (%) Time (days) 40000 ppm Nanoemulsion Essential oil Figure 4 Mortality percentage of Ephestia kuehniella exposed to same concentration of Mentha longifolia oil and its nanoemulsion over time. Discussion A reduction in the quality of foodstuff would be important for control of E. kuehniella. In this study, an eco-friendly formulation was used that reduces EOs limitations in control of insect pests. Prepared nanoemulsion from M. longifolia oil could increase the toxicant effect of this oil on E. kuehniella. Also, it boosts the oil persistence time. It is noteworthy to mention, that there is no data about the impacts of formulations containing plant essential oils on E. kuehniella. In the present study, a new method for production of nanoemulsion has been used. Adjuvant materials of formulation and essential oil that are used in this compound are completely eco-friendly. The produced nanoemulsion with this technique can be employed in storage houses to conserve foodstuff from pest damages. The mentioned nanoemulsion has been produced from nanoparticle of M. longifolia as active ingredient. The main constituents of M. longifolia oil are pulegone (28.84%), 1, 8- cineol (19.6%), p-menthan-3-one-cis (8.2%), βpinene (6.46%) and p-menthan-3-one-trans Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 178 (5.86%). Biological properties of EO are mainly due to the main components that typically are in high values. In this respect, the insecticidal effect of 1,8 cineol has been proved by Kordali et al. (2006). Elansary et al. (2013) reported similar combination of M. longifolia oil. They showed that pulegone (56.43%) had the highest value among the other compounds. Because fumigant toxicity of M. longifolia oil is stronger than its contact toxicity (Shahmirzaei et al., 2016), using nanoemulsion technique can increase the contact activity of EO and its durability, through slow-release of active ingredients over time. The average nanoparticle size has been estimated around 234nm by using GMS in formulation. There are similar studies where GMS accompany with compounds except essential oil as nanocapsules core has been used for production of nanoparticles (Tiyaboonchai et al., 2007; Nayak et al., 2010). Negahban et al. (2013a) estimated the average nanoparticle size encapsulated A. sieberi oil by using poly urea formaldehyde polymer about 95.5nm. In addition to the used polymer, other factors such as the applied method, synthesis conditions and active ingredient type play an important role in nanoparticle size (Uppal et al., 2010; Dang et al., 2012; Allahvaisi et al., 2017). GMS is used for the first time in nanoemulsion formulation containing EO. Our data indicated that this polymer has a high capability to load biopesticides like EO. The results showed that nanoemulsion (LC50 = 14068ppm) compared to EO (LC50 = 21352ppm) has stronger contact toxicity and effect on mortality rate of E. kuehniella 5th instar larva. There are some data about different formulations on various pests. Lai et al. (2006) demonstrated high physical stability of solid lipid oil of A. arborescens L. on B. tabaci (Gennadius) in different temperatures for a period of 60 days. In the period of keeping, oil type and its quality and quantity was constant. Negahban et al. (2013 a & b) concluded that nanocapsulated oil of A. sieberi has a stronger impact than oil of this plant on repellency and nutrition values of P. xylostella (Lep.: Plutellidae). These observations are in good agreement with present results. Similar conclusions were obtained about effect of nanocapsulated essential oil from C. copticum on P. xylostella (Jamal et al., 2013). Moreover, in present study durability rate of nanoemulsion (PT50 = 17.13 day) compared with oil (PT50 = 2.39 day) was longer. The highest insect mortality of nanoemulsion was determined during the first five days. This trend declined slowly until day 33 when no mortality was observed. Mentha longifolia oil had the greatest release volume in the primary hours (24 h), and it was reduced quickly. The mortality rate reached to zero after day 7. Therefore, nanoemulsion method can improve performance of M. longifolia oil and maintains its properties in a long-term. Passino et al. (2004) stated that the highest release rate of microcapsulation from R. officinalis oil (75%) accrued within 25 days. In other study, prepared nanoemulsions from different EOs on Aedes aegypti (L.) had a better physical stability and longer durability than the oils by themselves (Nuchuchua et al., 2009). Laing et al. (2012) increased stability and bioavailability of peppermint oil starch based on the nanoemulsion. Their results confirm our findings. Mentha longifolia is considered as a prevalent plant in most areas of Iran (Kamkar et al., 2012). Insecticidal properties of M. longifolia oil have been demonstrated by other researchers, like fumigant toxicity and repellency on T. confusum (Saeidi and Moharramipour, 2013), contact activity against Sitophilus oryzae L. (Motamedi et al., 2011), and oviposition deterrency against Callosobrucus maculatus F. (Bruchidae) (Shakarami et al., 2010). There is no information about preparing formulation from M. longifolia essential oil and its effect on E. kuehniella until now. According to the results, production of nanoemulsion with this new technique results in considerable decrease of the required EO concentrations. Moreover, nanoemulsion can increase stability and durability of M. longifolia essential oil. In fact, this technique owing to its controlled release of oil improve the control operation in the long Louni et al. _______________________________________________________ J. Crop Prot. (2018) Vol. 7 (2) 179 term. Since the 5th instar larva of E. kuehniella is a resistant pest, it is reasonable to claim that nanoemulsion has an acceptable control on it. In conclusion, owing to the existence of different aromatic plants in Iran, we can use species with higher toxicity that would be more economical to produce nanoemulsions. References Abbott, W. S. 1925. A method for computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology, 18: 265-267. Allahvaisi, S., Talebi Jahromi, K., Imani, S. and Khanjani, M. 2017. Efficacy of electrospun bionanofibers as fumigant pesticides in foodstuff storage. Journal of Plant Protection Research, 57: 72-80. Anandharamakrishnan, C. 2014. Techniques for Nanoencapsulation of Food Ingredients. Springer Briefs in Food, Health, and Nutrition pp. 1-69. Dang, T. M., Le, T. T. T. and Fribourg-Blanc, E. 2012. Influence of surfactant on the preparation of silver nanoparticles by polyol method. Advanced in natural sciences: Nanoscience and Nanotechnology, 3: 1-4. Dent, D. 2000. Insect pest management. Second edition. CABI Publishing, Ascot, UK. Elansary, H. and Ashmawy, A. A. 2013. Essential Oils of Mints between benefits and hazards. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 16: 429-438. Fields, S. and White, D. G. 2002. Alternatives to Methyl bromide treatments for storedproduct and Quarantine insects. Annual Review of Entomology, 47: 331-359. Finney, D. J. 1971. Probit Analysis. 3rd ed. Cambridge University, London. Gusmao, N. M. S., Oliveira, J. V., Navarro, D. M. A. F., Dutra, K.A., Silva, W.A. and Wanderley, A. J. A. 2013. Contact and fumigant toxicity and repellency of Eucalyptus citriodoraHook., Eucalyptus staigeriana F., Cymbopogon winterianus Jowitt and Foeniculum vulgare Mill. essential oils in the management of Callosobruchus maculatus (FABR.) (Coleoptera: Chrysomelidae, Bruchinae). Journal of Stored Products Research, 54: 41-47. Hansen, L. S. and Jensen, K. M. V. 2002. Effect of temperature on parasitism and host-feeding of Trichogramma turkestanica (Hymenoptera: Trichogrammatidae) on Ephestia kuehniella (Lepidoptera: Pyralidae). Journal of Economic Entomology, 95: 50-56. Jamal, M., Moharramipour, S., Zandi, M. and Negahban, M. 2013. Efficacy of nanoencapsulated formulation of essential oil from Carum copticum seeds on feeding behavior of Plutella xylostella (Lep.: Plutellidae). Journal of Entomological Society of Iran, 33: 23-31. Jemaa, J. M., Tersim, N. and Boushih, E. 2013. Fumigant control of the Mediterranean flour moth Ephestia kuehniella with the noble laurel Laurus nobilis essential oils. Tunisian Journal of Plant Protection, 8: 33-44. Kamkar, A., Shariatifar, N., Jamshidi, A. H., Jebelli, Javan A., Sadeghi, T. and Zeagham Monfared, M. M. 2012. In vitro Evaluation of Antioxidant Activity of Iranian Mentha longifolia Essential Oil and Extracts. Journal of Medicinal Plants, 33: 185-194. Kavadia, M. R., Yadav, M. G., Odaneth, A. A. and Lali, A. M. 2017. Production of glycerol monostearate by immobilized Candida antarctica B lipase in organic media. Journal of Applied Biotechnology & Bioengineering, 2: 1-7. Kordali, S., Aslan, I., Calmasur, O. and Cakir, A. 2006. Toxicity of essential oils isolated from three Artemisia species and some of their major components to granary weevil, Sitophilus granarius (L.) (Coleoptera: Curculionidae). Industrial Crop and Products, 23: 162-170. Lai, F., Wissing, S. A., Muller, R. H. and Fodda A. M. 2006. Artemisia arborescens L. essential oil-loaded solid lipid nanoparticles for potential agricultural application: preparation and characterization. American Association of Pharmaceutical Scientists, 7: 1-9. Laing, R., Xu, S., Shoemaker, C. F., Li, Y., Zhong, F. and Huang, Q. 2012. Physical and antimicrobial properties of peppermint oil Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 180 nanoemulsions. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 60: 7548-7555. Majeed, H., Bian, Y. Y., Ali, B., Jamil, A., Majeed, U., Farid, Q., Iqbal, K.J., Shoemaker, C. F. and Fang, Z. H. 2015. Essential Oil Encapsulations: Uses, Procedures, and Trends. The Royal Society of Chemistry, 5: 58449-58463. Moharramipour, S. and Nazemi Rafih, J. 2008. Repellency of Nerium oleander L., Lavandulla officinalis L. and Ferula assafoetida L. extracts on Tribolium castaneum (Herbst). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 23: 444-452. Moharramipour, S. and Negahban, M. 2014. Plant essential oils and pest management. In: Sahayaraj, K. (Eds), Basic and Applied Aspects of Biopesticides. Springer, India, pp: 129-154. Moretti, M. D. L., Sanna-Passino, G., Demontis, S. and Bazzoni, E. 2002., Essential oil formulations usefulas a new tool for the insect pest control. American Association of Pharmaceutical Scientists, 3: 1-11. Morishita, M. 2001. Toxicity of some insecticides to larvae of Flankliniella occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) evaluated by the petri dish-spraying tower method. Applied Entomology and Zoology, 36: 137-141. Motamedi, Y., Fallahzadeh, M. and Roshan V. 2011. Contact toxicity of three plant essential oils on adult insects of Sithophilus oryzae (Coleoptera: Curculionidae). Plant Protection Journal, 3: 135-144. Nayak, A. P., Tiyaboonchai, W., Patankar, S., Madhusudhan, B. and Souto E. B. 2010. Curcuminoids-loaded lipid nanoparticles: Novel approach towards malaria treatment. Colloid Surfaces B, 81: 263-273. Negahban, M., Moharramipour, S., Zandi, M. and Hashemi S. A. 2013a. Efficiency of nanoencapsulated essential oil of Artemisia sieberi Besser on nutritional indices of Plutella xylostella. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 29: 692-708. Negahban, M., Moharramipour, S., Zandi, M. and Hashemi S. A. 2013b. Repellent activity of nanoencapsulated essential oil of Artemisia sieberi Besser on Plutella xylostella L. larvae. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 29: 909-924. Nuchuchua, O., Usawadee, S., Uawongyart, N., Puttipipatkhachorn, S., Soottitantawat, A. and Ruktanonchai U. 2009. In Vitro Characterization and Mosquito (Aedes aegypti) Repellent Activity of EssentialOils-Loaded Nanoemulsions. American Association of Pharmaceutical Scientists, 10: 1234-1242. Passino, G. S., Bazzoni, E. and Moretti, M. D. L. 2004. Microencapsulated essential oils active against indianmeal moth. Boletin de Sanidad Vegetal Plagas, 30: 125-132. Rajendran, S. and Sriranjini, V. 2008. Plant products as fumigants for stored-product insect control. Journal of Stored Product Research, 44: 126-135. Ranjan, S., Dasgupta, N. and Lichtfouse, E. 2016. Nanoscience in Food and Agriculture. Sustainable Agriculture Reviews, 20: 1-341. Rumbos, C. I., Sakka, M., Berillis, P. and Athanassiou C. G. 2016. Insecticidal potential of zeolite formulations against three storedgrain insects, particle size effect, adherence to kernels and influence on test weight of grains. Journal of Stored Products Research, 68: 93-101. Saeidi, M. and Moharramipour S. 2013. Insecticidal and repellent activities of Artemisia khorassanica, Rosmarinus officinalis and Mentha longifolia essential oils on Tribolium confusum. Journal Crop Protection, 2: 23-31. SAS Institute, 1996. SAS/STAT user’s guide. Release 6.12 edition. Cary, NC. Shahmirzaei, Z., Izadi, H. and Imani, S. 2016. Study on the contact and fumigant toxicity of Mentha longifolia L. against the confused flour beetle (Tribolium castaneum). Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 32: 556-559. Shakarami, J., Falahzadeh, M. and Almasi, S. 2010. Fumigation toxicity and oviposition deterrency of four plant essential oils on cowpea beetle. Plant Protection Journal, 2: 265-276. Louni et al. _______________________________________________________ J. Crop Prot. (2018) Vol. 7 (2) 181 Sharopov, F. S. 2012. Essential oil composition of Mentha longifolia from wild populations growing in Tajikistan. Journal of Medicinally Active Plants, 1: 76-84. Tesfu, F. and Emana, G. 2013. Evaluation of Parthenium hysterophorus L. powder against Callosobruchus chinensis L. (Coleoptera: Bruchidae) on chickpea under laboratory conditions. African Journal of Agriculture Research, 8: 5405-5410. Tiyaboonchai, W., Tungpradit, W. and Plianbangchang, P. 2007. Formulation and characterization of curcuminoids loaded solid lipid nanoparticles. International Journal of Pharmaceutics, 337: 299-306. Topuz, O. K., Ozvural, E. B., Zhao, Q., Huang, Q., Chikindas, M. and Gulukcu, M. 2016. Physical and antimicrobial properties of anise oil loaded nanoemulsions on the survival of foodborne pathogens. Food Chemistry, 203: 117-123. Uppal, M. A., Kafizas, A., Ewing, M. B. and Parkin A. V. 2010. The effect of initiation method on the size, monodispersity and shape of gold nanoparticles formed by the Turkevich method. New Journal of Chemistry, 34: 2906-2914. Ziaee, M., Moharramipour, S. and Francikowski, J. 2014a. The synergistic effects of Carum copitum essential oil on diatomaceous earth against Sitophilus granarius and Tribolium confusum. Journal of Asia-Pacific Entomology, 17: 817-822. Ziaee, M., Moharramipour, S. and Mohsenifar, A. 2014b. Toxicity of Carum copitum essential oil-loaded nanogel against Sitophilus granarius and Tribolium confusum. Journal of Applied Entomology, 138: 763-771. Nanoemulsion containing M. longifolia against E. kuehniella ____________________________ J. Crop Prot. 182 اثر حشرهکشی نانوامولسیون حاوي اسانس پونه longifolia Mentha علیه شبپره آرد Ephestia kuehniella 1 ، *جهانشیر شاکرمی 1 مژده لونی ومریم نگهبان 2 1 -گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزي، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران. 2 -مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، تهران، ایران. نویسنده مسئول مکاتبه: جهانشیر شاکرمی، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزي، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران * پست الکترونیکی نویسنده مسئول مکاتبه: ir.ac.lu@j.shakarami دریافت: 30 دي 1396؛ پذیرش: 10 اردیبهشت 1397 چکیده: در سالهاي اخیر فرمولاسیونهاي مختلفی مانند نانوامولسیونها جهت رساندن ترکیبات آفتکشها و افزایش عملکردهاي بیولوژیکی آنها روي هدف بهطور گسترده استفاده شدهاند. در این مطالعه سمیت تماسی اسانس پونه .L longifolia Mentha در مقایسه با نانوامولسیون آن روي شبپره آرد Zeller kuehniella Ephestia بررسی شده است. آزمایشات در دماي 1 ± 27 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5 ± 65 درصد تحت شرایط تاریکی انجام شد. ترکیبات شیمیایی اسانس گیاهی نیز p-menthan- ،(درصد 19/6) 1,8-cineol ،(درصد 28/84) pulegone شامل عمده ترکیبات. شد مطالعه نتایج. بود) درصد 5/86) p-menthan-3-one-trans و) درصد 6/46) β-pinene ،(درصد 8/2) 3-one-cis نشان داد که نرخ مرگومیر لاروهاي سن پنجم شبپره آرد با افزایش غلظت (10000-40000 پیپیام) براي اسانس و (8000-20000 پیپیام) براي نانوامولسیون افزایش یافت. میزان LC50 اسانس 21352 پیپیام بود، در حالیکه این مقدار براي نانوامولسیون 14068 پیپیام بود. مطابق با نتایج، اثر نانوامولسیون بسیار بیشتر از اسانس بود. اسانس پونه دوام کمتري (days 39.2 = PT50 (در مقایسه با نانوامولسیون (days 13.17 = PT50 (در بالاترین غلظت بهدست آمده از اسانس داشت. سایز ذرات نانو زمانی که الکترون میکروسکوپ پرتو گذر (TEM (بهکار برده شد حدود 14-36 نانومتر بود. مرفولوژي سطح نانوامولسیون نیز بهوسیله TEM بررسی شد. میانگین سایز ذرات با استفاده از دستگاه light laser (SEMATech (scattering 234 نانومتر تخمین زده شد. نتایج کلی نشان میدهد که با استفاده از فرمولاسیون نانوامولسیون اثر سمیت تماسی و دوام اسانس افزایش مییابد. بنابراین فرمولاسیون داراي رهایش تدریجی نانوامولسیون احتمالاً یک دستهبندي جدید از آفتکشهاي زیستی را نشان میدهد و باید در مدیریت تلفیقی آفات (IPM (در نظر گرفته شود. واژگان کلیدي: سمیت تماسی، شبپره آرد، اسانس، پونه، نانوامولسیون
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
in the name of god
Abstract
In Iran, during conducting significant research, the importance of Talaromyces flavus antagonistic fungus has been known to inhibit the growth of some of the important soilborne plant pathogens such as Rhizoctonia solani, Verticillium dahliae and Fusarium oxysporum. Also, according to the results of previous studies, preparation abovementioned fungal bio formulation was possible with substrates in the form of various plant residues such as rice bran, wheat straw and corn wood using them in the greenhouse and field, in addition to reducing. The occurrence of diseases such as the seedling death, Verticillium and Fusarium wilt in cotton, sugar beet, potato, and greenhouse tomato and cucumber, increased yield also observed. According to the results obtained to this stage of the research, the commercialization of the bio-formulation of this fungus is very importance. Since the marketing is considered as one of the important factors for the continuation of commercialization, consideration of the type of bio formulation with easy applications can greatly affect the attraction of relevant consumers and a successful marketing. Therefore, in light of the recent advances in the application of nanotechnology in various sciences, it seems necessary in the further research to prepare different nano formulations of the biological agent with an emphasis on the ease of use, and study their efficacy
in biological control of the plant diseases. In this study, we prepared nano-bio-formulations including two types of nanocapsules (F1 and F3), a type of nano emulsion (F2), and a powder type nano formulation (F4) form T. flavus fungus. Three and six months after the production, laboratory tests of nanoformulations were performed in a completely randomized design in terms of the efficiency in inhibiting the colony growth of Verticillium dahliae. The results showed that nanopowder was more effective than other nanoformulations in term of inhibiting the colony growth of the pathogen.
Author: Laleh Naraghi, Maryam Negahban
سایت اصلی شرکت نانوسبزآوران طوبی
www.nstooba.com
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
Abstract
In Iran, during significant research, the importance of the antagonistic fungus,Talaromyces flavushas been known for the inhibition of the growth of some important plant soil pathogens such asRhizoctonia solani, Verticillium dahliae and Fusarium oxysporum. Also, according to the results of previous studies, preparation of the above-mentioned fungal bioformulations with substrates in the form of different plantresidues such as rice bran, wheat straw and corn wood was possible and using them in the greenhouse and field, in addition to reducing the incidence of the diseases such as the seedling death, Verticillium and Fusarium wilt in cotton, sugar beet, potato, tomato and greenhouse cucumber, increased yield was also observed. According to the results obtained to this stage of the research, the commercialization of the bioformulation of this fungus is of particular importance. Since the marketing is considered as one of the important factors for the continuation of commercialization, considering the type of bioformulation with easy applications can greatly affect the attraction of relevant consumers and a successful marketing. Therefore, in light of the recent advances in the application of nanotechnology in various sciences, it seems necessary to prepare different nanoformulations of the above biological agent with an emphasis on the ease of use, and study theefficacy in biological control of the plant diseases. In this study, nanoformulations were prepared in two types: nanocapsule (F1 and F3), a type of nanoemulsion (F2), and a type of powder nanoformulation (F4) of T. flavus.
Author: Laleh Naraghi, Maryam Negahban
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
بسم الله الرحمن الرحیم
زنبورهای عسل مهمترین گرده افشان های میوه ها، سبزیجات، گل ها هستند. همچنین، محصولاتی مثل یونجه که غذای حیوانات اهلی ما هست را گرده افشانی می کنند. بیش از یک سوم محصولات کشاورزی جهان به گرده افشانی زنبورها بستگی دارد.
میوه ها و سبزیجات با حضور زنبورها
میوه ها و سبزیجات بدون زنبورها
اما نکته ی قابل توجه این است که زنبورها غذای ما را آگاهانه گرده افشانی نمی کنند. زنبور ها به علت احتیاج به غذا در محیط حضور دارند و گرده افشانی می کنند.
زنبور ها تمامی پروتئین مورد نیاز خود را از گرده و تمام کربوهیدرات (قند) مورد نیاز خود را از شهد گل ها تامین می کنند.
در واقع زنبور ها در حین تغذیه، در حالی که از گلی به گل دیگر می روند، عمل گرده افشانی را انجام می دهند.
.در مناطقی از جهان که زنبور داری وجود ندارد یا مناطقی که تنوع گیاهی شان برای زنبور ها جذاب نیست، مردم با دست گرده افشانی می کنند و دستمزد دریافت می کنند. این افراد گرده ها را از گلی به گل دیگر با قلم مو منتقل می کنند.
گرده افشانی دستی خیلی هم غیر معمول نیست. اکثر تولید کننده گان گوجه فرنگی گلخانه ای، خودشان گل های گوجه را با ویبراتور دستی گرده افشانی می کنند. چرا که گرده گوجه فرنگی به صورت ایمن و محکم در داخل بساک (گرده دان) نگهداری می شوند و تنها راه آزاد کردن این گرده ها لرزاندن آن ها هست.
زنبور های بامبل (bumble bees) از معدود زنبورهای گرده افشانی هستند که می توانند درون گل بمانند و آن را بلرزانند. آن ها این کار را با لرزاندن عضله های پروازشان و با فرکانسی شبیه نت موسیقی (c) انجام میدهند. بنابراین آنها گل را به لرزه درمی آورند، صدا تولید میکنند و این صدا گرده ها را آزاد می کند و گرده ها روی بدن پرزدار زنبور جمع می شوند و زنبور آن ها را با خود به خانه می برند.
پرورش دهندگان گوجه فرنگی کندوهای حاوی زنبورهای بامبل را داخل گلخانه های خود قرار می دهند چراکه این زنبور ها گرده افشانی بسیار خوبی را برای گوجه فرنگی انجام می دهند.
بیشتر از ۲۰٫۰۰۰ نوع زنبور گرده افشان در دنیا وجود دارد که اغلب دوره زندگی خود را به طور مخفیمخفی درون زمین یا ساقه های توخالی می گذرانند. تعداد خیلی کمی از این گونه ها، مثل زنبورهای عسل در رفتارهای اجتماعی پیشرفت کرده اند.
هر کندو حدود 40 الی 50 هزار زنبور دارد. برخی زنبور ها قادر هستند که افراد مریض و آلوده را شناسایی و از کندو خارج کنند. همچنین زنبور ها رزین های طبیعی را که بسیار چسبناک هست را از سطح گیاهان تراشیده و جمع آوری می کنند و با خود به لانه می برند و با آن لانه های چند وجهی خود را معماری می کنند که ما به آن موم می گوییم.
موم یک ضد عفونی کننده و آنتی بیوتیک طبیعی است. موم به سرعت باکتری ها، قارچ ها و سایر میکروب های داخل کندو را از بین می برد.
13 سال پیش وقتی برای اولین بار در آمریکا گزارش شد که زنبورها در حال از بین رفتن هستند، مشخص بود که مشکلی اساسی وجود دارد.
دلایل از بین رفتن زنبورهای عسل
کاهش گیاهان گلدار و تغذیه ضعیف زنبورها
در آمریکا زنبورها از زمان جنگ جهانی دوم رو به کاهش شدید بوده اند. در مقایسه با سال 1945 تا کنون تعداد کندوها نصف شده اند و دو میلیون کندو کاهش پیدا کرده است. این به دلیل تغییر روش های کشاورزان از جنگ جهانی دوم به بعد می باشد.
کاشت محصولات پوششی مانند شبدر و یونجه متوقف شد. این گیاهان به طور طبیعی از طریق باکتری های همزیست ریشه هایشان نیتروژن موجود در هوا را در خاک تثبیت می کنند. به جای کاشت این گیاهان پوششی شروع به استفاده از کودهای شیمیایی کردند. گل های یونجه و شبدر غذای بسیار مغذی برای زنبورها هستند.
برای کنترل علف های هرز به طور وسیع شروع به استفاده از علف کش های شیمیایی کردند. بسیاری از این علف ها، گیاهان گلدار هستند که زنبورها برای زنده ماندن به تغذیه از آن ها احتیاج دارند.
در آمریکا کشاورزان شروع به کاشت مزارع بزرگ تک محصولی مثل ذرت کردند که غذای مناسبی برای زنبورها نیستند.
باغاتی مانند بادام که برای گرده افشانی و تولید محصول نیازمند زنبورها هستند در حال گسترش هستند ولی زنبورها روز به روز در حال از بین رفتن هستند و در آینده این باغات مشکل جدی برای گرده افشانی خواهند داشت.
آفت کش ها
بعد از جنگ جهانی دوم کشاورزان شروع به استفاده از آفت کش های شیمیایی به مقدار زیاد کردند و این کار به امری واجب تبدیل شد. چون به علت تک کشتی های ایجاد شده غذای فراوان در اختیار آفات بود و از طرفی دشمنان طبیعی آن ها از بین رفت بدین ترتیب آفات به سرعت جمعیتشان بیشتر شد و پایین آوردن جمعیت آن ها الزامی بود. و کشاورزان بیشتر و بیشتر به سموم شیمیایی وابسته شدند.
اخیرا محققان دانشگاه “Penn State” شروع به تحقیق روی باقیمانده سموم در دانه های گرده ای که زنبورها به عنوان غذا با خود به کندوهایشان حمل می کنند کردند. آن ها دریافتند که هر نمونه ی گرده که مورد بررسی قراردادند به حداقل 6 آفت کش قابل شناسایی آلوده هستند. این آفت کش ها شامل تمامی گروه های حشره کش، علف کش، قارچ کش و … بودند. دانه های گرده حتی حاوی برخی ترکیبات بودند که به عنوان ماده همراه آفت کش ها در فرمولاسیون آن ها به کار می روند. این ترکیبات برای زنبورها گاها بسیار سمی تر از خود آفت کش هستند.
این زنبورهای کوچک آینه ای هستند که نشان میدهد چه مقدار از این سموم شیمیایی از طریق غذا به بدن ما سرایت می کند.
یکی از پرمصرف ترین نوع این آفت کش ها نئونیکوتینوئید ها هستند که مکانیسم اثر سیستمیک داشته و به داخل شیره گیاهی نفوذ کرده و در کل گیاه پخش می شود. با نیش زدن حشرات آفت و مکیدن مقدار اندکی از شیره آوند های گیاه، این دسته از سموم وارد بدن حشرات شده و موجب مرگ آن ها می شوند.
اگر یکی از این سموم نئونیکوتینوئیدی در غلظت بالایی (مثل مصرف در خاک) استفاده شود، مقدار کافی از آن توسط گیاه جذب شده و در همه جای گیاه پخش می شود و به شهد و گرده می رسد. زنبوری که از این شهد و گرده تغذیه کند، دوز بالایی از آفت کش را دریافت می کند و دچار تشنج شده، به خود میپیچد و می میرد.
در مواردی که فقط بذور هنگام کاشت با این سموم آغشته شوند، دوز خیلی کمی از این سموم به گرده و شهد می رسد. در این صورت ممکن است زنبور ها مسموم یا گیج شوند و مسیر بازگشت به کندو را پیدا نکنند.
توضیح : در فیلم هیچ اشاره ای به سمپاشی برگ های محصولات کشاورزی با این سموم نشده است. و گویا در کشور آمریکا استفاده ی خاکی و آغشته کردن بذرها مرسوم هست.
اما در کشور ما به راحتی این سموم را بر روی شاخ و برگ گیاهان مختلف می پاشند و آفات را کنترل می کنند و حشرات مفید مانند زنبورها می توانند به طور مستقیم با این سموم مسموم می شوند.
پارازیت ها و بیماری ها
کنه واروآ (Varroa destructor) دشمن شماره یک همه زنبورهای عسل می باشد. انگلی بزرگ و خونخوار که سیستم ایمنی زنبور ها را ضعیف کرده و ویروس ها را منتشر می کند.
ما نمیدانیم زنبوری که یک انگل بزرگ بر روی خود دارد چه حسی دارد!!! نمی دانیم وقتی زنبورها بدنشان توسط ویروس ها مورد حمله قرار بگیرد چه حسی دارند!!!
اما خودمان زمانی که به ویروس آنفولانزا مبتلا هستیم را تجربه کرده ایم. میدانیم که چقدر سخت هست تا خودمان را به فروشگاه برسانیم تا مواد غذایی تقویت کننده تهیه کنیم. چه حالی داشتیم اگر در یک بیابان تهی از مواد غذایی زندگی می کردیم و باید مسافت بسیار طولانی طی میکردیم تا به فروشگاه برسیم. و در آنجا مواد غذایی دارای مقدار زیاد سم عصبی مصرف میکردیم و انقدر حالمان بد می شد که نتوانیم راه خانه را پیدا کنیم. این همان دلایلی هست که عامل مرگ زنبور ها می شود.
این موارد فقط مختص زنبور عسل ما نیست. گونه های بسیاری از زنبورهای زحمتکش وجود دارند که گرده افشانی میکنند. این زنبورها پشتیبان زنبور های عسل ما هستند. این زنبورها عمل گرده افشانی کامل را در کنار زنبورهای عسل بیمه می کنند. ما به همه گونه های زنبور هایمان احتیاج داریم.
.
.
.
پس با این شرایط وخیمی که برای زنبورهایمان ایجاد کرده ایم باید چه کنیم؟
جای امیدواری همچنان وجود دارد. هر کدام از ما می توانیم به دو صورت بسیار آسان به زنبورها کمک کنیم.
گل هایی که زنبورها دوست دارند بکاریم
این گل ها را با آفت کش های شیمیایی آلوده نکنیم
در اینترنت جست و جو کنید و گل هایی که بومی محل زندگی شماست را در گلدان یا باغچه دم در خود بکارید. از شهرداری ها بخواهید در پارک ها گل های مناسب زنبورها را به طور متناوب در طول فصل فعالیت زنبورها بکارند.
باید مزارع را از تک کشتی خارج و به صورت چند کشتی در بیاوریم (در کشور ایران به علت خرده مالکی بودن مزارع، تنوع کشت بالا می باشد و مشکل اصلی مصرف سموم شیمیایی بالا می باشد).
حاشیه و پرچین های مزارع را گلکاری کنیم.
وقتی زنبورها به منابع غذایی مناسب و مغذی دسترسی داشته باشند، ما نیز به منابع غذایی کافی دسترسی خواهیم داشت.
منبع : سایت TED
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
بسم الله الرحمن الرحیم
پسیل پسته یا شیره خشک
Pistachio psylla
Aganoscena targionii (Psyllidae,Hom.)
Syn: Psylla targionii
پسیل پسته در بعضی نواحی پسته کاری به «شیره خشک» معروف است زیرا عسلک دفع شده توسط آن به سرعت رطوبت خود را از دست می دهد و بصورت بلورهای سفید یا شیری رنگ روی تنه، شاخه و برگ درختان باقی می ماند تراکم این آفت در بعضی باغها به قدری شدید است که تمام سطح شاخه و تنه درختان و زمین سایه انداز درخت پوشیده از عسلک میشود.
انواع درختان پسته اهلی و وحشی میزبان این آفت هستند و خسارت شدید آن تقریباً از همه نقاط پسته خیز ایران و کشورهای منطقه گزارش شده است.
نحوه خسارت
خسارت این آفت ناشی از مکیدن فراوان شیره گیاهی است که باعث ضعف شدید درخت ، ریزش میوه های کوچک، پوک شدن میوه های باقیمانده و در تراکم بالا منجر به ریزش برگ درخت می شود.
مرفولوژی
پسیل پسته از زنجره کوچک تر است و طول بدن آن حدود 1.6 تا 1.8 میلیمتر است. برخلاف زنجره پسته سر در این گونه عریض تر از سینه نیست و تقریباً هم عرض آن می باشد. روی سر و چشمها برآمده و لُب های فرق سر کاملاً مشخص است. شاخکها بلند و ده مفصلی و همین مفصل دارای 2 خار نسبتاً بزرگ است. رنگ عمومی بدن در حشرات بالغ زرد روشن و روی سر و سینه لکه های کشیده ای به همین رنگ ولی تیره تر وجود دارد. شکم معمولاً به رنگ بدن است و اغلب دارای لکه های قهوه ای رنگ کشیده می باشد. تخم ها بیضی شکل و به رنگ زرد مایل به نارنجی بوده و اکثراً به صورت انفرادی یا ردیفی در پشت برگها و در کنار رگبرگ ها گذاشته می شوند. پوره ها برنگ زرد و دارای لکه های قهوه ای می باشند.
بیولوژی
پسیل پسته زمستان را بصورت حشرات کامل زیر برگهای خشک، پوستک درختان و روی سرشاخه های پسته به سر می برد. به نظر میرسد که مقاومت آن در مقابل عوامل نامساعد جوی بخصوص تغییرات درجه حرارت در زمستان کم وبیش مشابه پسیل گلابی می باشد و به خوبی در مقابل سرمای زمستانه مقاومت می کند. در شرایط کرمان حشرات کامل اواخر اسفند ماه ظاهر میگردند. تخم ریزی خیل زود به محض گرم شدن هوا حتی در اسفند ماه شروع شده و بر روی سرشاخه ها و برگها تخم ریزی میکند. پوره ها مصادف با باز شدن جوانه ها و ظهور برگها از تخم خارج می شوند. پوره ها عسلک فراوان از خود دفع می کنند که گاهی خود نیز در ترشحات خود غرق می شوند. بدین ترتیب خوشه ها، برگها، شاخه، تنه و سطح زمین زیر سایه انداز درخت به شدت به عسلک آلوده می شود. دوره پورگی در نسل اول حدود 50 روز است ولی با گرم شدن هوا این مدت به 25-30 روز تقلیل پیدا می کند. پسیل پسته حشره ای است چند نسلی که بسته به شرایط آب و هوایی ممکن است تا 5 نسل در سال ایجاد کند.
تخم و پوره سن یک (original)
پوره سنین اولیه پسیل پسته (original)
حشره بالغ پسیل پسته (original)
تراکم جمعیت پسیل پسته (original)
پوره سن آخر پسیل پسته (original)
کنترل بیولوژیکی :
زنبورهای پارازیتوئید : زنبور .Psyllaephagus sp از خانواده Encyrtidae تا 80% پوره ها را می تواند پارازیته کند و به همین دلیل است که با از بین رفتن این زنبور در مناطق سم پاشی شده با سموم شیمیایی علیه سایر آفات پسته این آفت حالت طغیانی پیدا میکند. هر پوره پسیل توسط یک زنبور و فقط برای یک مرتبه مورد حمله واقع می شود و یک تخم داخل بدن پوره گذاشته می شود. پس از تفریخ تخم زنبور و شروع تغذیه از پوره ها، کم کم بدن پوره ها حالت کشیده پیدا می کند و مومیایی می شود. پوره های پارازیته شده بعد از مومیایی شدن به راحتی با چشم غیر مسلح قابل شناسایی هستند. لارو زنبور پس از اتمام مراحل رشدی تبدیل به شفیره شده و در نهایت زنبور بالغ با بریدن دایره ای پوسته پسیل مومیایی شده از آن خارج می شود.
پوسته پسیل دارای سوراخ خروجی زنبور پسیلوفاگوس (original)
پوسته پسیل دارای سوراخ خروجی زنبور پسیلوفاگوس (original)
حشره بالغ زنبور پارازیتوئید پسیل پسته
شکارگرها : بالتوری سبزChrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae) یک شکاگر عمومی هست که در باغات پسته به وفور یافت می شوند. لارو بالتوری سبز از تخم ها و پوره های پسیل پسته تغذیه می کند.
پیله شفیرگی بالتوری سبز (original)
حشره بالغ بالتوری سبز
لارو بالتوری سبز
کفشدوزک های شکارگر Hippodamia variegata (Goeze, 1777) و Oenopia conglobata (L.) از مهمترین کفشدوزک های فعال در باغات پسته می باشند که از پسیل پسته تغذیه می نمایند.
کفشدوزک Hippodamia variegata
کفشدوزک Oenopia conglobata
از زمانی که سموم شیمیایی جهت کنترل آفات وارد میدان شده اند، هرگز نتوانسته اند به طور کامل و برای مدت طولانی مشکل خسارت آفات را رفع کنند. بلکه با از بین بردن عوامل کنترل بیولوژیک طبیعی چرخه تعادل طبیعی را به هم زده و سال به سال مشکل جدی تر شده است. از طرف دیگر هر ساله آفات به تعداد بیشتری از ترکیبات شیمیایی مقاوم می شوند و جمعیت خود را به سرعت افزایش می دهند. کشاورزان مجبور می شوند دوز مصرف سموم را بالاتر ببرند تا محصولشان در امان باشد ولی حشرات مفید شکارگر و پارازیتونید هرگز نمی توانند به سرعت آفات به این سموم مقاوم شوند و هر روز بیشتر و بیشتر جمعیتشان کاهش پیدا می کند.
در حال حاضر پسیل پسته به بسیاری از سموم شیمیایی مانند مونتو و … که زمانی کنترل قاطعی داشتند مقاوم شده است. با افزایش نرخ دلار و بالارفتن قیمت سموم شیمیایی حفاظت از دشمنان طبیعی آفات و رعایت اصول IPM جهت بازگشت به کنترل طبیعی آفت ضروری به نظر می رسد.
کارت زرد
در نظر عموم استفاده از کارت های زرد یک روش غیر شیمیایی و مفید تلقی می گردد. در حالی که رنگ زرد نه تنها برای آفات بلکه برای اکثر حشرات مفید نیز جلب کننده می باشد. بنابراین استفاده بی رویه و غیر کارشناسی از کارت های زرد منجر به از بین رفتن تعداد زیادی از دشمنان طبیعی مانند کفشدوزک ها، بالتوری ها، انواع زنبور های پارازیتوئید و … می گردد.
پسیل پسته از اواخر اسفند ماه فعالیتش را شروع می کند در حالی که زنبور پارازیتوئید پسیلوفاگوس از اواسط فروردین ماه فعالیت خود را آغاز می کند و این فاصله بهترین فرصت برای نصب کارت زرد می باشد که حشرات ماده پسیل که زمستان گذرانی کرده اند را قبل از تخمریزی به دام بیاندازد.
استفاده از آفت کش های غیر شمیایی
از چند جنبه مهم میتوان عدم استفاده از سموم شیمیایی را توجیه نمود :
ایجاد مقاومت به سموم شیمیایی و اجبار به افزایش دوز مصرف سموم
افزایش بیماری هایی مانند سرطان که بخشی از آن منتصب به باقیمانده سموم در محصولات کشاورزی می باشد
خطر ابتلای کشاورزان و کارگران سمپاش به انواع بیماری های پوستی و سرطان در اثر عدم استفاده از پوشش حفاظتی و تماس بدن با سموم
کشته شدن دشمنان طبیعی آفات با سموم شیمیایی ⇐ افزایش جمعیت آفات به علت نبود دشمنان طبیعی ⇐ افزایش دفعات سمپاشی و دوز مصرفی سموم شیمیایی ⇐ وابستگی همه جانبه به سموم شیمیایی
از بین رفتن حشرات گرده افشان مانند زنبورها ⇐ کاهش تولید عسل + عدم گرده افشانی صحیح گیاهان ⇐ کاهش تولید محصولات کشاورزی (برای اطلاعات بیشتر در این مورد کلیک کنید)
از چند جنبه مهم می توان استفاده از آفت کش های غیر شیمیایی را توجیه نمود :
حفاظت از دشمنان طبیعی و کمک کردن به افزایش جمعیت آن ها و واگذار کردن بخشی از کنترل آفت به آن ها
مناسب برای تولید محصولات ارگانیک و سالم بر پایه مدیریت تلفیقی آفات IPM
امکان صادرات محصولات تولید شده به کشورهای اروپایی و ارز آوری برای کشور
عدم آلودگی منابع آب های زیر زمینی و خاک
عدم ایجاد اختلال در رشد طبیعی گیاه :
1- برخی سموم شیمیایی به علت داشتن حلال های نفتی با نفوذ به داخل گیاه باعث گیاهسوزی می شوند
2- سموم سیستمیک نیز با نفوذ به جریان شیره گیاهی، در فیزیولوژی و رشد طبیعی گیاه اختلال ایجاد می کند
آفت کش گیاهی لیکوتوکس با مکانیسم اثری متفاوت از سموم شیمیایی، باعث مرگ و میر شدید پسیل شده و پوره ها نیز پس از خروج از تخم و تغذیه از برگ های سمپاشی شده از بین می روند
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
بسم الله الرحمن الرحیم
تریپس
تریپس ها معمولا جزء سه آفات مهم (کنه تارتن دولکه ای، سفید بالک، تریپس) برای گلخانه داران توت فرنگی کار، خیار کار، گل رز و سایر گل های زینتی می باشند. البته در بسیاری از گیاهان جالیزی و باغی و زراعی نیز خسارات زیادی وارد می کنند.
این حشرات در گیاهانی مانند توت فرنگی و خیار با تغذیه از گل ها موجب کاهش تولید و بدشکلی میوه ها میشوند. در گلخانه های رز و گیاهان زینتی نیز با تغذیه از گلبرگ ها به زیبایی گل ها آسیب وارد می کنند و موجب کاهش بازار پسندی و قیمت گل می شوند.
توت فرنگی خسارت دیده
توت فرنگی سالم
تغذیه تریپس از مادگی گل توت فرنگی
خسارت تریپس روی گل رز
تریپس دارای مراحل تخم، لارو سن 1، لارو سن 2، پیش شفیره، شفیره و بالغ می باشد. که تخم در داخل بافت گیاه گذاشته می شود و مراحل شفیره و پیش شفیره در بستر کشت نمو خود را سپری می کنند. فقط تریپس بالغ می تواند پرواز کند و مراحل نابالغ قدرت پرواز ندارند.
تریپس ها به هر دو نوع کارت های زرد و آبی چسبنده جذب می شوند و می توان از آن ها به منظور شکار انبوه (Mass traping) استفاده کرد. با این حال گفته می شود تریپس ها به کارت های آبی بیشتر جلب می شوند.
کارت و نوارهای رنگی چسبنده اگر به صورت عمودی نصب شوند تریپس های بیرون گلخانه را نیز به داخل گلخانه جلب می کنند ولی اگر به صورت افقی نسب شوند برای تریپس های بیرون به صورت خط باریکی دیده می شود ولی تریپس های داخل گلخانه به خوبی آن را خواهند دید. این نکته به خصوص برای گلخانه هایی که درز بندی مناسبی ندارند و امکان ورود آفات از خارج گلخانه به داخل وجود دارد اهمیت بسیار دارد.
گلخانه داران باید علف های هرز گلدار بیرون گلخانه را که محلی برای ذخیره تریپس ها می باشد از بین ببرند.
آفت کش ها فقط مراحل بالغ و لارو ها را می توانند از بین ببرند و اثر بسیار محدودی روی تخم، پیش شفیره و شفیره دارند. چرا که تخم ها داخل بافت گیاه و پیش شفیره و شفیره نیز در داخل بستر کشت می باشند. بنابراین باید سمپاشی های منظم صورت گیرد تا تریپس های بالغی که دائما از خاک بیرون می آیند را کنترل کند. بعلاوه به علت این که بالغ ها در داخل غنچه و قسمت های مختلف گل مخفی می شوند امکان تماس با سموم تماسی کم هست.
با این حال تریپس ها در ساعات 7.5 الی 8.5 صبح برای جفت گیری بیرون می آیند. همچنین دو ساعت مانده به غروب (night fall) روی برگها و بیرون غنچه ها تجمع پیدا می کنند و فرمون تجمعی تریپس های بیشتری را فرا می خواند. این فرمون شناسایی شده و به صورت مصنوعی ساخته شده است. شرکت سینگنتا نیز این فرمون را تجاری کرده است. با استفاده از این فرمون در هر زمان از طول روز تریپس ها از مکان های مخفی بیرون کشیده می شوند و امکان تماس با سموم تماسی و سموم بیولوژیک مثل beauveriabassiana بیشتر می شود.
تریپس ها به گل هایی مثل گل جعفری(همیشه بهار) مکزیکی که گرده زیادی دارند جلب می شوند که اگر در فاصله 10 متری خارج گلخانه قرار بگیرند به عنوان گیاه تله مورد استفاده قرار می گیرد.سپس می توان با استفاده ازbeauveriabassiana، آفت کشها و همچنین شکارگرها این تریپس های روی گیاهان تله را قبل از ورود به گلخانه از بین برد.
از سوی دیگر می توان ازپلاستیک های منعکس کننده نقره ای در ورودی ها و دریچه های گلخانه به عنوان دورکننده تریپس های بالغ استفاده کرد.
بسیاری از کنه های شکارگر برای کنترل تریپس استفاده می شود که فقط به لارو سن یک و لارو سن دو حمله می کنند چون تریپس های بالغ راهی برای در امان ماندن از حمله کنه ها دارند. تریپس های بالغ شکم خود را تاب می دهند و مدفوع مایع را به صورت کنه شکارگری که در حال آمدن است می پاشند. Orius تنها شکارگری است که به راحتی به تریپس های بالغ حمله می کند اما در کشت هایی که گرده به فراوانی نباشد مستقر نمی شود. شفیره و پیش شفیره چند روز را در خاک یا برگ های ریخته شده سپری می کنند جایی که در معرض حمله کنه شکارگر خاکزی به نام Hypoaspis و برخی نماتد های انگل حشرات مثل Steinernema هستند.
یک برنامه IPM نیازمند ترکیب همه این عوامل بیولوژیک و استراتژی های کنترل هست چرا که هر کدام به مقداری جمعیت را کنترل می کند.
ترکیبات زیاد لزوما منجر به پخت کیک خوشمزه نمی شود بلکه باید ترکیبات صحیح با کیفیت عالی و در تناسب مناسب با یکدیگر باشند. گاهی عوامل کنترل بیولوژیک باهم رقابت می کنند و مانع کار یکدیگر می شوند. تقاضا برای کنترل بیولوژیک در حال افزایش است و بسیاری از توزیع کنندگان سموم عوامل کنترل بیولوژیک را همچون سم می فروشند.
سال هاست A. cucumeris و پرسیملیس با هم در برنامه های IPM استفاده می شود و هیچ مشکل شکارگری درون رسته ای ندارند. این ممکن است به این دلیل باشد که A. cucumeris طیف شکار زیادی ندارد و از تریپس های خیلی جوان تغذیه می کند و پرسیمیلیس فقط از کنه تغذیه می کند و به هم حمله نمی کنند. کنه شکارگر جدید Amblyseiusswiriskii شکارگر عمومی تری از A. cucumeris است بنابراین اگر به دقت استفاده نشود پتانسیل تخریب برنامه های بیوکنترل علیه سایر آفات را دارد.
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
بسم الله الرحمن الرحیم
مورفولوژی
مادههای بالغ تقریباً 0.5 میلی متر طول دارند و بدنشان کروی شکل است. افراد نر بدنهای کشیدهتری داشته و کوچکتر از مادهها میباشند. در طول فصل رشد رنگ عمومی بدن زرد یا سبز کم رنگ بوده و دارای دو لکه تیره که در طرفین بدن دیده میشوند، میباشد ولی در شرایط آب و هوایی معتدل رنگ مادههای بالغ زمستان گذران به رنگ قرمز آجری سوخته تغییر مییابد. تخمها کروی شکل و کوچک (به قطر 0.14 میلی متر) بوده و از آنها لاروهای کوچک و سفید رنگ با سه جفت پا خارج میشوند. بعد از مرحله لاروی وارد مرحله پوره گی شده و دارای چهار جفت پا میباشند.
کنه تارتن دولکه ای
کنه تارتن دولکه ای
پراکنش و گیاهان میزبان
کنه تارتن دو نقطهای انتشار جهانی داشته و در سرتاسر جهان یکی از آفات مهم تعداد زیادی از گیاهان میباشد . میزبانهای مهم این کنه شامل سبزیجات، درختان میوه، ذرت، پنبه و تعداد زیادی از گیاهان زینتی میباشد که جمعاً شامل 1059 میزبان گیاهی میباشد.
مکانیسم تغذیه
کنه تارتن دو لکهای عموماً از سطح زیری برگها تغذیه میکند. با استفاده از استیله های سوزنی شکل سلولها را میشکافد و محتویات آن را از طریق پمپ حلقی به داخل بدن میکشد. طول استایلت در لارو کنه ها حدود 100 میکرون و در کنه های ماده حدود 150 میکرون است.
کنه دو استایلت خود را به هم قفل کرده و یک لوله مکش به قطر دو میکرون را تشکیل می دهد و به این ترتیب محتویات سلول را تخلیه می کند. بنابر این کنه با استایلت خود فقط یک کانال درست می کند. ولی در حشراتی مثل شته ها و پسیل با استایلت خود دو کانال تشکیل می دهند. یک کانال برای تزریق بزاق به داخل سلول و دیگری برای مکش غذا است که به ترتیب کانال بزاقی و کانال غذایی گفته می شود.
کنه های تارتن استایلت خود را از حد فاصل بین سلولهای اپیدرمی و یا از داخل منافذ روزنه های برگ وارد سلول های مزوفیل و سلولهای مزوفیل اسفنجی می کنند، بدون اینکه به سلول های اپیدرمی آسیبی وارد کنند. سپس محتویات سلول را به داخل دستگاه گوارش خود پمپاژ می کنند. در ضمن رنگ پریدگی برگها پس از تغذیه کنه ها اتفاق می افتد.
مدت زمان تغذیه یک کنه از چند دقیقه تا بیش از نیم ساعت ممکن است طول بکشد. در ضمن رنگ پریدگی برگها بلافاصله پس از تغذیه کنه رخ نمی دهد. قبلا گفته می شد که هر کنه در هر دقیقه می تواند 20 سلول مزوفیل (یعنی سلولهای زیر اپیدرم) را تخریب کند. ولی همانطور که گفته شد این نظریه جای شک دارد چون تحقیقات جدید با میکروسکوپ الکترونی نشان می دهد که هر کنه ممکن است برای هر سلول از چند دقیقه تا نیم ساعت وقت صرف کند.
تحقیقات نشان می دهد که در مدت 10 دقیقه سلول اول حدود 70 تا 85 درصد و سلول مجاور آن از 20 تا 30 درصد خسارت می بینند. معمولا این رفتار کنه ارتباطی به واریته و رقم ندارد و تقریبا این الگو در گیاهان مختلف مشابه است.
به طور خلاصه تا اینجا کنه تارتن استایلت خود را از حدفاصل سلولهای اپیدرمی و یا از منافذ روزنه ها وارد سلولهای مزوفیل می کند بدون اینکه به سلولهای اپیدرمی آسیبی وارد کند. در ضمن همانطور که عرض شد طول استایلت کنه حدود 100 تا 150 میکرون است و این در حالی است که ضخامت برگ هم حدود 100 تا 150 میکرون است پس کنه به راحتی می تواند به هر کجای برگ که دلش بخواهد با استایلت خود جولان دهد.
بنابراین دسترسی کنه به سلول های پلاستیدها و سلول های مزوفیل اسفنجی بسیار آسان است. آنچه که قبلا گفته می شد که کنه سلول را پاره می کند و سپس از محتویاتی که از سلول به سطح برگ خارج می شود و تغذیه می نماید. صحیح به نظر نمی رسد. مطالب بالا تاکید دارد که کنه استایلت خود را به طور مستقیم وارد سلول کرده و محتویات آن را تخلیه می کند.
اگر کنه ها بخواهند محتویات سلول را مکش کنند باید ابتدا قبل از تغذیه بزاق خود را وارد سلول کنند تا اول عمل هضم و آبکی شدن سلول رخ دهد و بعد این محتویات را مکش کنند. چون بعضی از اندامهای های داخل سلول از قطر کانال کنه بزرکتر است و همینطوری نمی تواند وارد کانال غذایی کنه شود. به احتمال زیاد کنه قبل از تغذیه بزاق خود را به داخل سلول تزریق می کند.
مراحل تغذیه کنه تارتن دولکه ای
1- وارد کردن استایلت به داخل سلول گیاهی
2- تزریق بزاق و هضم اولیه
3- آبکی کردن محتویات سلول گیاهی
4- مکش محتویات آبکی به داخل روده
وقتی کنه مشغول تغذیه از سلول است سیستم واکنش دفاعی گیاه فعال می شود و باید منجر به این شود که سول هایی که سالم هستند واکنش دفاعی به خود بگیرند. اما بزاق کنه دارای ویژگی هایی است که می تواند سیستم دفاعی گیاه را دستکاری کند و در اختیار بگیرد که این موضوع در حال بررسی و تحقیق است. به احتمال زیاد بزاق کنه می تواند سیستم دفاعی گیاه را متوقف کند و به همین دلیل کنه می تواند به راحتی از یک سلول به سلول دیگر جولان دهد.
پس از تغذیه کنه از سلول های گیاه تعرق گیاه زیاد میشود و ممکن است برگهای آسیب دیده خشک شده و ریزش کنند. در آلودگیهای طولانی مدت و شدید پژمردگی، مرگ بافت و بدشکلی برگ دیده میشود. قطع فتوسنتز موجب کاهش رشد گیاه و کاهش محصول میشود. همچنین بقایای کنه تارتن دولکه ای شامل تار، تخم، پوستههای پورگی و مواد دفعی به زیبایی گیاه آسیب میرساند.
زیست شناسی
دوره زندگی کنه تارتن دو نقطهای شامل تخم، لارو، پروتونمف، دئوتونمف و بالغ است. در انتهای مرحله لاروی و هر دوره نمفی یک مرحله غیر فعال وجود دارد که در این مرحله کنه در یک جا ثابت مانده و پوست اندازی میکند. نرها به فرمون جنسی دئوتونمف های ماده در حال استراحت جلب میشوند. جفت گیری به محض ظهور مادهها انجام و تخمگذاری شروع میشود.
کنه نر بالغ در انتظار خروج کنه ماده از مرحله استراحت سن آخر
تخم و لارو کنه تارتن تازه خارج شده از تخم
تخم و لارو کنه تارتن تازه خارج شده از تخم
سه کروموزوم هاپلوئید دارد و تولید مثل از نوع بکرزایی Arrhenotokous میباشد. نسبت جنسی سه ماده به ازای یک نر میباشد. بهترین دما برای رشد و نمو این کنه در حدود 29-23 درجه سلسیوس میباشد که موجب میشود دوره زندگی این کنه در 12-25 روز کامل گردد.
برخی پژوهشگران معتقدند رژیم غذایی مراحل مختلف زندگی کنه اثر معنی داری روی نرخ رشد و نمو، طول دوره رشدی، بقا و میزان باروری مادهها دارد. در گیاه رز در دمای 20 درجه سلسیوس دوره پیش از تخمریزی 7.1 روز و تکامل تخم، لارو، پروتونمف و دئوتونمف به ترتیب 7.6، 2.8، 3.2 و 1.3 روز طول میکشد.
تکامل یک نسل در دمای 15، 20 و 30 درجه سلسیوس به ترتیب نیازمند 36.3، 16.6 و 7.3 روز میباشد. روی کوتیلدون های پنبه متوسط دوره رشد برای مادهها 25.8 تا 29 روز در دمای 15.5 درجه سلسیوس و 6.7 تا 6.1 روز در دمای 29.4 درجه سلسیوس بوده و برای نرها کمی کوتاهتر میباشد. متوسط باروری در دمای 23.8 درجه سلسیوس 103.3 تخم و در 29.4 درجه سلسیوس 64.3 تخم به ازای هر ماده میباشد. 74 درصد نوزادان تبدیل به ماده میشوند و به طور میانگین 14.71 روز در دمای 23.8 درجه سلسیوس و 9.71 روز در دمای 29.4 درجه سلسیوس زنده میمانند. اگر چه دمای بالا موجب کاهش طول عمر کنهها میشود ولی باعث افزایش سرعت رشد جمعیت نیز میگردد .
آستانه دمایی 12 درجه سلسیوس میباشد . در 25 درجه سلسیوس روی کوتیلدون پنبه تولید مثل خالص R₀) 7.8) میباشد و نرخ ذاتی افزایش جمعیت r_m) 0.219) فرد به ازای هر ماده در روز میباشد و نرخ متناهی افزایش λ) 1.24) فرد به ازای هر ماده در روز میباشد.
افزایش میزان نیتروژن در گیاهان میزبان، طول دوره رشدی کنه تارتن را کاهش و باعث افزایش جمعیت این کنه روی گیاه میزبان میگردد. از عوامل موثر دیگر در تغییر اندازه جمعیت، مرگ و میر و پراکنش افراد میباشد. در اثر فرسوده شدن بافت گیاه میزبان و بالا بودن تراکم کنه روی گیاه، کنه برای بدست آوردن منابع غذایی جدید به اطراف مهاجرت کرده و موجب کاهش تراکم جمعیت میگردد. کنه تارتن میتواند جمعیت خود را روزانه تا 40 درصد افزایش دهد. این افزایش رشد جمعیت معمولاً بطور ناگهانی در اثر فشار ایجاد شده توسط دشمنان طبیعی خاتمه مییابد.
کنه تارتن دولکه ای در مناطق گرم به طور مداوم فعال است ولی در مناطق معتدل به صورت مادههای دیاپوزی زمستان گذرانی میکند. کوتاهی طول دوره روشنایی، کاهش دما و منابع غذایی بی کیفیت ظهور مادههای دیاپوزی را تحریک میکند که موجب توقف تغذیه و تخمریزی، ترک گیاه و تغییر رنگ میشود.
کنترل بیولوژیک
دشمنان طبیعی بسیار زیادی برای کنه تارتن دو لکهای شناسایی شده است که مهمترین آنها عبارتند از:
کنههای خانواده Phytoseiidae که شناختهترین آنها گونه Phytoseiulus persimilis Anthias-Henriot میباشد، به طور اختصاصی فقط از کنههای تارتن تغذیه نموده و در تعداد کثیری از گلخانههای تجاری مورد استفاده قرار میگیرد. همچنین گونه Amblyseius swiriskii Athias-Henriot شکار گر موثر دیگری است که علاوه بر کنه تارتن از تریپس و سفید بالک نیز تغذیه میکند و برای برنامههای IPM مناسبتر به نظر میآید.
کنه شکاگر Phytoseiulus persimilis
کنه تارتن خورده شده توسط شکاگر پرسیمیلیس
کنه شکاگر Amblyseius swirskii
کفشدوزک Stethorus sp.، سن شکارگر Macrolophus sp.، تریپس شکارگر Scolothrips sp. و حشرات خانواده Chrysopidae به عنوان شکارگرهای کنه تارتن شناخته شدهاند. Feltiella acarisugaVallot از پشههای خانواده Cecidomyiidae نیز از دشمنان طبیعی کنههای تارتن میباشد که توسط شرکتهای تولید کننده عوامل کنترل بیولوژیک عرضه شده است.
کفشدوزک شکاگر Stethorus sp
شفیره کفشدوزک شکاگر Stethorus sp
لارو پشه شکاگر Fletia
لارو پشه شکاگر Fletia
به طور کلی سموم شیمیایی به دلیل حلال های نفتی موجود در آن ها باعث سوزانندگی جوانه ها و گل های می شوند. این موضوع به خصوص در گلخانه های رز بسیار مشهود هست. به طوری که سموم شیمیایی جوانه هایی را که قرار هست تبدیل به شاخه های گل شوند را در مراحل اولیه از بین می برند و تعداد شاخه در بوته کاهش می یابد اما در گلخانه هایی که از ترکیبات سالم مانند ماریا_پرو یا از کنترل بیولوژیک توسط کنه های شکارگر استفاده می کنند همیشه شاهد تعداد بالایی از شاخه های گل دهنده هستیم که حتی بیش از 13 شاخه گل دهنده در یک بوته دیده شده است. که این افزایش تولید از نظر اقتصادی هزینه بالاتر روش های کنترل بیولوژیک توسط کنه های شکارگر را توجیه می کند. همچنین سموم شمیایی علاوه بر گیاهسوزی وارد شیره گیاهی شده و سرعت رشد گیاه را کاهش می دهند. کنه کش گیاهی ماریا_پرو در عین حالی که به طور قاطع کنه های تارتن را کنترل می کند با دوز مصرفی پایین (1 درهزار) و قیمت بسیار مناسب (حتی کمتر از کنه کش های شیمیایی رایج)، جایگزین مناسبی برای سموم شیمیایی می باشد.
شاخه گل های رزی که با سموم شیمیایی سمپاشی نمی شوند قوی تر و با کیفیت تر می باشد و به دو دلیل در بازار فروش قیمت بالایی دارند :
1– هرچه حجم غنچه گل رز درشت تر و بلند تر باشد قیمت بالاتری و مشتریان بیشتری دارد.
2– بازار های عرضه گل همه روزه از 4 صبح شروع به کار می کنند و قیمت گل در ساعات اولیه شروع به کار بازار بیشترین مقدار خود را دارا می باشد و هر چه به ظهر نزدیک تر می شویم قیمت گل کاهش می یابد. بنابراین علاوه اثر مستقیم کیفیت گل بر قیمت، اثر غیر مستقیم آن در جلب مشتریان در ساعات اولیه بازار گل نیز بر سود حاصل از فروش آن می افزاید.
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی
یک مقاله منتشر کرده.
بسم الله الرحمن الرحیم
نام علمی (Aculops lycopersici)
از خانواده Eriophydae
کنه های بسیار ریز که روی سطح زیری برگ های پایینی، دمبرگ ها، ساقه و میوه های گوجه فرنگی کلنی های بسیار بزرگی ایجاد می کنند. در اثر تغذیه این کنه ها ساقه ها برنزه شده و به شکل زنگار دیده می شوند. برگ ها نیز کم کم زرد شده، پیچیده می شوند، خشک شده و در نهایت ریزش پیدا می کنند. سطح میوه های آلوده نیز برنزه شده و زبر و خشبی می گردند. گیاهان شدیدا آلوده کرک (trichomes) های خود را از دست می دهند. تغذیه و آسیب کنه ها از پایین گیاه شروع شده و به سمت بالا گسترش پیدا می کند و ممکن است با کمبود عناصر غذایی، بیماری های گیاهی و استرس آبی اشتباه گرفته شود. کنه زنگار گوجه فرنگی در سطح محدود تر به سایر گیاهان خانواده Solanaceae نیز حمله می کند.
گاهی علائم خسارت این کنه با بیماری فیتوفترا اشتباه گرفته می شود. تفاوت این دو در این است که در بیماری فیتوفترا بعد از دو تا سه روز گیاه خشک شده و از بین می رود ولی در مورد این کنه رشد گیاه کم می شود و برگها پلاسیده و به رنگ حنایی در می آید ولی به رشد و نمو خود ادامه می دهد.
کنه زنگ گوجه فرنگی Aculops lycopersici متعلق به خانواده Eriophydae می باشد. کنه ها این خانواده بسیار ریز، کرمی شکل، با بدنی بند بند و نرم هستند. بر خلاف سایر کنه ها که 4 جفت پا دارند، این کنه ها دارای دو جفت پا هستند. این کنه ها براق و به رنگ زرد، قهوه ای یا صورتی هستند.
گونه های دیگر کنه های این خانواده موجب زنگار در مرکبات و سیب می شوند (کنه زنگار مرکبات و کنه زنگار سیب). برخی نیز منجر به ایجاد گال در برگ ها می شوند (کنه گال نمدی مو، کنه گال نمدی گردو).
کنه حنایی گوجه فرنگی در سطح زیری برگ، دمبرگ و ساقه های بخش های پایینی گیاه تخمریزی می کند. تخم ها ابتدا سفید رنگ و به مرور زرد رنگ می شوند.
دارای دو سن پورگی هست که پوره ها از محل تفریخ تخم زیاد دور نمی شوند. پوره سن یک در حدود 0.1 میلی متر طول دارد و سفید و شفاف می باشد که در عرض یک روز به پوره سن دو تبدیل می شود.
کنه های بالغ نیز حدود 0.17 میلی متر طول دارند که نرها اندکی کوچکتر از ماده ها هستند.
در شرایط گرم رشد کنه ها بسیار سریع است و مراحل تخم تا بالغ در کمتر از یک هفته تکمیل می گردد. آب و هوای گرم و خشک برای رشد کنه زنگار بسیار مناسب می باشد. برعکس این کنه ها تحمل یخبندان زمستانه را ندارند و در صورت عدم وجود پناهگاه مناسب در مدت چند ساعت پس از قرار گرفتن در دمای زیر صفر تمامی مراحل از بین خواهند رفت.
وقتی خسارت در قسمت های پایینی گیاه شدید شد، کنه ها به سمت بخش های جوان تر حرکت می کنند. زمانی که گیاه کاملا خسارت دید و مرگ گیاه نزدیک شد، کنه ها در بالاترین قسمت گیاه تجمع پیدا می کنند و از طریق باد منتقل می شوند.
علف های هرز تاجریزی (nightshade) و نیلوفر یا پیچک صحرایی (bindweed) به عنوان میزبان ثانویه می توانند منبع آلودگی باشند.
روش های مدیریت
استفاده از نشاء های سالم و غیر آلوده
ممنوعیت رفت آمد ادوات و افراد از بخش های آلوده مزرعه یا گلخانه به بخش های غیر آلوده
به دلیل سایر بسیار کوچک کنه ها، پایش از طریق جستجوی اولین علایم زنگار و تایید آلودگی با لنز قوی یا بینوکولر انجام می گیرد. بخش های برنزه شده و برگ ها و ساقه های سالم اندکی بالاتر از قسمت برنزه باید بررسی شوند.
محدوده و وسعت لکه ای محل های آلوده باید علامت گذاری شود و هر چند روز یک بار احتمال گسترش محدوده آلوده مجددا چک شوند. وقتی که علائم خسارت رو به گسترش گذاشت، اقدام فوری با کنه کش های گیاهی مناسب باید انجام پذیرد. و از دشمنان طبیعی نیز برای به کنترل در آوردن کنه زنگ می توان استفاده کرد.
مبارزه با علف های هرزی که میزبان کنه زنگار هستند.
جمع آوری و از بین بردن بقایای گیاهی که میتواند پناهگاه خوبی برای زمستان گذرانی کنه ها باشند.
رعایت تناوب زراعی و عدم کاشت پیاپی گوجه فرنگی و سایر گیاهان خانواده سولاناسه
کنه های شکارگر از مهمترین دشمنان طبیعی کنه های زنگار می باشند. مطالعات نشان داده است که کنه های شکارگر Amblyseius cucumeris، Amblyseius californicus و Amblyseius montdorensis قادر به تغذیه از کنه زنگار هستند اما قدرت کنترل کافی در شرایط گلخانه ای را ندارند. اما گونهAmblyseius andersoni که اخیرا معرفی شده قدرت خوبی در کنترل این کنه دارد.
استفاده از کنه کش های زیست سازگار و امن برای دشمنان طبیعی و عدم استفاده از حشره کش های وسیع الطیف، موجب ارتقاء کیفیت کنترل بیولوژیک می گردد. کنه کش های زیست سازگار باید بعد از مشاهده علائم زنگار و تایید حضور کنه ها استفاده شوند.
اولین نفری باشید که پسند می کنید
شرکت نانو سبزآوران طوبی اطلاعات
شرکت نانو سبزآوران طوبی
به نام خدا
معرفی شرکت نانو سبزآوران طوبی
شرکت نانو سبزآوران طوبی با استفاده از اساتید نخبه موسسه تحقیقات گیاهپزشکی و کارشناسان پژوهشی متخصص و با تجربه در جهت رفع نيازهاي راهبردي کشور آغاز به کار نموده است. رسالت اصلی شرکت طوبی حفظ سلامت انسان، دام و محیط زیست از طریق تولید آفتکش های گیاهی سازگار با محیط زیست برای کنترل آفات کشاورزی و دامی می باشد. به عبارت دیگر کنترل آفات توسط ترکیبات عاری ازسموم شیمیایی در سرلوحه برنامه های این شرکت قرار دارد.
این شرکت با استفاده از فناوری های نو در عرصه کنترل آفات با قابلیت تلفیق با کنترل بیولوژیک موفق به عرضه محصولات جدیدی شده است. استفاده از آفتکش های بیولوژیک و گیاهی به همراه سایر روش های کنترل بيولوژيک گامي بزرگ در توليد محصولات کشاورزي سالم به شمار می رود. حشره کش هاي گياهي تهیه شده از انواع مواد موثره گیاهی مي باشند که با فرمولاسيون نوین مي تواند ضمن حفظ خاصيت مواد موثره خود در محيط؛، کارايي بالا يي در کنترل و مديريت آفات کشاورزي داشته باشد. از محصولات تجاری این شرکت تحت عنوان آفتکش گیاهی لیکو پست و فیتوتوکس معرفی شده اند. این ترکیبات به دليل اثرات حشره کشي روي آفات مختلف و خطرات کم آن براي انسان و پستانداران جايگزين مناسبي برای سموم شيميايي در کنترل آفات محسوب می شوند.
تولید فرمولاسیون انواع آفت کش های گیاهی به شکل نانو و میکروکپسول
تولید انواع آفت کش های سالم و عاری از سم شیمیایی برای تولید محصولات کشاورزی سالم
تولید فرمولاسیون آفت کش های پلیمری نانوکپسوله برای آفات بهداشتی
تولید پودر و قرص های تدخینی برای محصولات انباری جایگزین متیل بروماید و فسفین
کپسوله کردن قارچ های بیمارگر حشرات ( بیو آفتکش ها)
کپسوله کردن انواع باکتری ها
تولید داروی گیاهی کنترل کنه واروآ انگل زنبور عسل
تولید داروهای ضدعفونی کننده انگل های خارجی دام، طیور و پرندگان
http://nstooba.com
Introduction of Nano Green TOOBA
Nano Green Tooba Company has started using elite professors of the Iranian Research Institute of Plant Protection and experienced experts to meet the strategic needs of the country. Tooba’s main mission is to protect human, animal and environmental health through the production of eco-friendly pesticides to control agricultural and livestock pests. In other words, control of pests by combining nontoxic and herbal nano radicals is at the top of the company’s plans. The company has succeeded in introducing new products through the use of new pest control technologies combined with biological control. The use of biological and plant pesticides along with other biological control methods is a major step in the production of healthy and organic agricultural products. Plant insecticides are prepared from various plant-based substances with the new formulation while preserving their active agents in the environment, can maintain a high level of control and management of agricultural pests. Due to the effects of insecticides on different pests and their low risk for humans and mammals, these compounds are the appropriate alternative to chemical pesticides in pest control.
Tooba is the name of an evergreen tree in heaven belong to Zahra, daughter of Mohammad prophet. All the love and kindness in the world comes from this tree. never dies…never dries
آمار
0 رتبه بندی مقاله
8 کل مقالات
1 مجموع نظرات مقالات











